猪伪狂犬病（Pseudorabies, PR）是由伪狂犬病病毒（Pseudorabies virus, PRV）引起的家畜和多种野生动物的急性、热性传染病，感染谱广，不同日龄猪均可感染，可造成极大的经济损失，以发热、奇痒及脑脊髓炎为特征。
一、PRV的流行现状
在我国，PRV最早于1947年在猫中检测到。到1980年时，PRV已经在我国很多地方检测到（图1）。到2001时，在国内绝大多数省市的猪只中PRV的检测率增高，还可以在其他动物比如牛、羊、猫、狗和水貂等动物中检测到（表1）。20世纪90年代，我国PR达到发病高峰。
2000到2011年间，因为疫苗免疫防控，PR得到了较好的控制。2011至2013年间，变异PRV导致我国猪PR的新一轮暴发和再度流行，在我国很多省市暴发（图2），甚至是很多免疫过PR疫苗的猪场，给养猪业造成巨大的损失。通过各种防控措施和免疫防控方法的使用，2014年至今，PR处于平稳阶段，尽管有些地方还是有疫情报道。变异PRV毒株引起的PR的重新暴发，提醒我们提高警惕，加强PRV的临床监控，研究变异PRV毒株的特性，研制针对变异PRV毒株的综合防控措施。
图1. 1980年前我国经典PRV感染的地理分布（Sun et al., 2016）
表1. 我国经典PRV毒株感染的地理分布和报道年份（Sun et al., 2016）
图2. 2011年后我国变异PRV感染的地理分布（Sun et al., 2016）
二、导致猪伪狂犬病病毒新毒株出现的原因和新PRV毒株gC基因的遗传进化特点
长期使用伪狂犬病疫苗，可能导致了PRV毒株的变异；猪场种猪群带毒，PRV毒株在不断的感染进化过程中；猪场不能实施净化，无法根除PRV；阳性猪场（带毒种猪）长期免疫——因免疫压力造成病毒的变异。
新PRV毒株gC基因的遗传进化特点如图3所示，表明我国变异PRV毒株和马来西亚PRV毒株构成了独立的基因二型。而目前为止，其他国家的PRV毒株处于基因一型中。表明本次我国变异PRV毒株的独特性。
图3. 来自不同国家PRV毒株的gC基因的遗传进化特点（Ye et al., 2016）
三、PRV主要传播途径
水平传播：
（1）空气传播：从育肥猪经空气传入(2-3km)，是目前大多数伪狂犬病发生猪场的风险点。需要监测90日龄以后猪的伪狂犬病gE抗体；
（2）引入潜伏感染猪；
（3）引入带毒公猪精液；
（4）（蓝耳病）血清人工驯化技术的风险；
垂直传播：
胎盘传播；其他动物传播途径：a:鼠类（如果在猪场周围发现鼠和猫死亡数量高于平时，需要注意伪狂犬病传入的风险（1985年爱尔兰案例）；
b:野猪： 8498个样本，2009-2012。35个州中有25个18%以上抗体呈阳性（Kerri Pedersen ，2013）。
四、主要诊断方法
1980年前主要的鉴定方法是病毒分离、病毒中和实验和动物感染实验。从19世纪90年代后，ELISA、PCR和定量PCR被广泛用于PRV的鉴定。因为检测机构众多，商品检测ELISA试剂盒也很多，目前还没有统一标准的鉴定方法。
依据gB/gE的ELISA方法被广泛运用，其中依据gB建立的ELISA主要用于评估疫苗免疫的免疫水平，依据gE建立的ELISA方法主要用于鉴别诊断感染猪只和疫苗免疫猪只。
现在很多分子诊断计数，比如PCR，定量PCR，环介导等温扩增，已经可以对野毒感染毒株和疫苗毒株进行区分。现在针对新毒株的检测和与经典PRV毒株以及疫苗PRV毒株的鉴别诊断技术已经建立（Meng et al., 2016）。临床实践中，对不同毒株的鉴别诊断对疾病的评估,后期防控措施的制定十分重要。
五、防控方法
A：伪狂犬病阴性猪场和尚未受到伪狂犬病病毒新毒株感染的猪场：加强生物安全措施，严防新毒株的传入；引种监测；人员进出控制；运输工具的清洗消毒和灭鼠等；
B：强化疫苗免疫接种：变异PRV毒株在很多免疫过经典PRV毒株来源的疫苗的猪场中依然引起发病，变异PRV来源的基因修饰疫苗对变异PRV感染引起的PR有较好的效果，而且便于与临床感染毒株的鉴别诊断（表2），不同毒株来源疫苗之间的交叉保护性还不确切，因此在选择疫苗毒株之前，需要对临床PRV感染毒株进行鉴别诊断。后备猪应在配种前进行2次伪狂犬病疫苗的免疫接种；经产母猪产前4周左右进行1次免疫；仔猪8-10周龄进行1次免疫；母猪群普免2-3次/年、仔猪滴鼻免疫；
表2 用于免疫的基因修饰PRV毒株（Freuling et al.,2016）
C：感染猪场（种猪场）：在做好疫苗免疫接种的基础上，开展净化工作；加强后备种猪的监测，用阴性后备种猪逐步替换和淘汰阳性种猪，最终建立阴性种猪群，达到阴性种猪场的标准。
净化是控制猪伪狂犬病的唯一出路：
净化的条件：基因缺失疫苗（gE缺失）；gE-ELISA抗体检测试剂盒；
净化的基本技术：免疫——gE基因缺失疫苗；监测——gE-ELISA检测种猪群（gE抗体阳性种猪）；淘汰——清除gE抗体阳性种猪；替换——引入gE抗体阴性后备种猪；清群——清除gE抗体阳性种猪群、PRV感染猪群
净化阶段与过程：
第一阶段：监测——种猪群感染带毒状况调查。依据种猪群大小和规模，按5%-10%进行采样，确定种猪群带毒率（gE抗体阳性率）；
第二阶段：强化免疫，gE基因缺失疫苗免疫，生物安全；
第三阶段：检测淘汰——全群检测，逐头采样，用gE-ELISA试剂盒。若种猪群带毒率<>
第四阶段：部分清群，若种猪群带毒率>10%或15%，进行全群检测，记录阳性种猪；实施部分清群；淘汰高胎次阳性种猪，用阴性后备种猪替换高胎次种猪。
第五阶段：监测与维持，种猪群全群采样进行检测，确认全部为阴性，无阳性带毒种猪；设立哨兵猪——在种猪舍放置PRV抗体阴性仔猪，观察是否感染和发病，检测gE抗体，确认为阴性；加强引种监测，禁止引入阳性带毒种猪；加强生物安全措施。达到免疫无疫（猪场无PRV）以及后面的停止疫苗免疫，不免疫无疫。
本文主要编译于何启盖教授和杨汉春教授在2015年和2016年李曼中国养猪大会的演讲报告及相关参考文献资料。
编译：陈芳洲
审阅：刘爱民博士
